بررسی اثر محافظتی یوژنول در مقابل سمیت ناشی از هایپرآمونیا در هیپوکمپ …

  • با گذشت زمان سیستم بدنی موشها میتواند استرس ناشی از تزریق آمونیا را کاهش داده و از طریق افزایش بیان GLT1 مانع نوروتوکسیسیتی شود.
  • یوژنول موجب افزایش بیان GLT1 و کاهش فعالیت آنزیم GS شده است.
  • تجویز آمونیوم استات و یوژنول منجر به ایجاد استرس اکسیداتیو در بافت هیپوکمپ نمیشود.
  • تزریق یوژنول به همراه آمونیا باعث تأثیر بیشتر اثر آمونیا شده است.
  • با وجود کاهش فعالیت GPX در گروه یوژنول + آمونیا بلافاصله نسبت به استراحت، میزان MDA نیز پایین است که این امر احتمالاً به علت بیان هماکسیژناز ۱ در گروه بلافاصله میباشد.
  • پیشنهادات

    1. اندازهگیری میزان گلوتامات خارج سلولی در گروه استراحت به منظور بررسی اثرات سمی آمونیا
    2. بررسی میزان فعالیت ناقل GLT1 در گروه استراحت برای تأیید بیشتر اثرات سمی آمونیا
    3. برای دانلود متن کامل این پایان نامه به سایت  pipaf.ir  مراجعه نمایید.

    4. اندازهگیری میزان بیان هم اکسیژناژ۱ در گروه بلافاصله برای بررسی بهتر استرس اکسیداتیو
    5. اندازهگیری میزان هماکسیژناز در گروههای تحت یادگیری
    6. سنجش سنتز گلیکوژن و میزان گلیکولیز با تزریق یوژنول

    منابع و مراجع

    1. O’Kusky, J. and M. Colonnier, A laminar analysis of the number of neurons, glia, and synapses in the adult cortex (area 17) of adult macaque monkeys.J Comp Neurol, 1982. 210(3): p. 278-90.
    2. Sofroniew, M.V. and H.V. Vinters, Astrocytes: biology and pathology.Acta Neuropathol, 2010. 119(1): p. 7-35.
    3. Butt, A.M. and B.R. Ransom, Visualization of oligodendrocytes and astrocytes in the intact rat optic nerve by intracellular injection of lucifer yellow and horseradish peroxidase.Glia, 1989. 2(6): p. 470-5.
    4. Volterra, A. and J. Meldolesi, Astrocytes, from brain glue to communication elements: the revolution continues.Nat Rev Neurosci, 2005. 6(8): p. 626-40.
    5. Fiacco, T.A., C. Agulhon, and K.D. McCarthy, Sorting out astrocyte physiology from pharmacology.Annu Rev Pharmacol Toxicol, 2009. 49: p. 151-74.
    6. Liedtke, W., et al., GFAP is necessary for the integrity of CNS white matter architecture and long-term maintenance of myelination.Neuron, 1996. 17(4): p. 607-15.
    7. McCall, M.A., et al., Targeted deletion in astrocyte intermediate filament (Gfap) alters neuronal physiology.Proc Natl Acad Sci U S A, 1996. 93(13): p. 6361-6.
    8. Gimenez, Y.R.M., et al., Comparative anatomy of the cerebellar cortex in mice lacking vimentin, GFAP, and both vimentin and GFAP.Glia, 2000. 31(1): p. 69-83.
    9. Cataldo, A.M. and R.D. Broadwell, Cytochemical identification of cerebral glycogen and glucose-6-phosphatase activity under normal and experimental conditions. II. Choroid plexus and ependymal epithelia, endothelia and pericytes.J Neurocytol, 1986. 15(4): p. 511-24.
    10. Ransom, B.R. and H. Sontheimer, The neurophysiology of glial cells.J Clin Neurophysiol, 1992. 9(2): p. 224-51.
    11. Barres, B.A., The mystery and magic of glia: a perspective on their roles in health and disease.Neuron, 2008. 60(3): p. 430-40.
    12. Hof, P.R., E. Pascale, and P.J. Magistretti, K+ at concentrations reached in the extracellular space during neuronal activity promotes a Ca2+-dependent glycogen hydrolysis in mouse cerebral cortex.J Neurosci, 1988. 8(6): p. 1922-8.
    13. Kelly, J.P. and D.C. Van Essen, Cell structure and function in the visual cortex of the cat.J Physiol, 1974. 238(3): p. 515-47.
    14. Rose, C.R. and B.R. Ransom, Regulation of intracellular sodium in cultured rat hippocampal neurones.J Physiol, 1997. 499 ( Pt 3): p. 573-87.
    15. Kuffler, S.W. and J.G. Nicholls, The physiology of neuroglial cells.Ergeb Physiol, 1966. 57: p. 1-90.
    16. Alvarez-Maubecin, V., et al., Functional coupling between neurons and glia.J Neurosci, 2000. 20(11): p. 4091-8.
    17. Kreft, M., et al., Aspects of astrocyte energy metabolism, amino acid neurotransmitter homoeostasis and metabolic compartmentation.ASN Neuro, 2012. 4(3).
    18. Sattler, R. and J.D. Rothstein, Regulation and dysregulation of glutamate transporters.Handb Exp Pharmacol, 2006(175): p. 277-303.
    19. Seifert, G., K. Schilling, and C. Steinhauser, Astrocyte dysfunction in neurological disorders: a molecular perspective.Nat Rev Neurosci, 2006. 7(3): p. 194-206.
    20. Ballanyi, K., P. Grafe, and G. ten Bruggencate, Ion activities and potassium uptake mechanisms of glial cells in guinea-pig olfactory cortex slices.J Physiol, 1987. 382: p. 159-74.
    21. Ransom, C.B., B.R. Ransom, and H. Sontheimer, Activity-dependent extracellular K+ accumulation in rat optic nerve: the role of glial and axonal Na+ pumps.J Physiol, 2000. 522 Pt 3: p. 427-42.